การยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์ม ความเป็นพิษต่อเซลล์ และการเสริมฤทธื์ของสำโรงร่วมกับโพลีมิคซินบี

ผู้แต่ง

  • วิสาตรี คงเจริญสุนทร คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา
  • พรพิมล บุตะเขียว คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา

คำสำคัญ:

การยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์ม, ความเป็นพิษต่อเซลล์, การเสริมฤทธิ์, สำโรง, โพลีมิคซินบี

บทคัดย่อ

งานวิจัยนี้ศึกษาฤทธิ์ยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์ม ความเป็นพิษ และการเสริมฤทธิ์กับโพลีมิคซินบีในการยับยั้งการเจริญของเชื้อแบคทีเรียดื้อยาของส่วนสกัดเอทานอลจากเปลือกต้นสำโรง ผลการยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์ม พบว่าส่วนสกัดจากเปลือกต้นสำโรงสามารถยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์มของเชื้อแบคทีเรีย Escherichia coli ATCC 25922, Staphylococcus aureus ATCC 25923 และ Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 ในช่วงเวลาตั้งแต่ 4-24 ชั่วโมง และยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์มของ Staphylococcus aureus ATCC 25923 ได้ดีที่สุด (% inhibition = 73.01±16.68 %) ที่เวลา 24 ชั่วโมง การศึกษา Time kill assay แสดงให้เห็นว่า เมื่อใช้เปลือกต้นสำโรงความเข้มข้นเท่ากับ 1/2 MIC ผสมกับยาโพลีมิกซิน บี 1/2 MIC สามารถเสริมฤทธิ์กันเพื่อยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อ Acinetobacter baumannii และ Pseudomonas aeruginosa และเปลือกสำโรงไม่มีความเป็นพิษต่อเซลล์แมคโครฟาจ (RAW 264.7) แต่สามารถเพิ่มการรอดชีวิตของเซลล์แมคโครฟาจ เมื่อใช้ความเข้มข้น 31.25-1,000μg/ml อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.01)

ประวัติผู้แต่ง

วิสาตรี คงเจริญสุนทร, คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา

ภาควิชาชีววิทยา

พรพิมล บุตะเขียว, คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา

ภาควิชาชีววิทยา

เอกสารอ้างอิง

Schroeder M, Brooks BD, Brooks AE. The complex relationship between virulence and antibiotic resistance. Gene 2017;8(39):3-23.

Reygaert WC. An overview of the antimicrobial resistance mechanisms of bacteria. AIMS Microbiology 2018; 26(4):482-501.

Kumar S, Singh B. An overview of mechanisms and emergence of antimicrobial drug resistance. Advances in Animal and Veterinary Sciences 2013;1(2S):7-14.

Dhama K, Chakraborty S, Mahima, Wani MY, Verma AK, Deb R, et al. Novel and emerging therapies safeguarding health of humans and their companion animals: a review. Pakistan Journal of Biological Sciences 2013;16:101-11.

Qureshi ZA, Hittle LE, O'Hara J A, Rivera JI, Syed A, Shields RK, et al. Colistin-resistant Acinetobacter baumannii beyond carbapenem resistance. Clinical Infectious Disease 2015;60(9):1295-303.

Subramani R , Narayanasamy M , Feussner KD . Plant-derived antimicrobials to fight against multi-drug-resistant human pathogens. Biotechnology 2017;7(3):172. doi: 10.1007/s13205-017-0848-9.

Cowan MM. Perspective on plant products as antimicrobials agents: a review. Phamacolodia 2013;4(7):469-548.

Cheesman MJ, Ilanko A, Blonk B, Cock IE. Developing new antimicrobial therapies: are synergistic combinations of plant extracts/compounds with conventional antibiotics the solution? Pharmacognosy Reviews 2017;11(22):57-72.

Septama AW, Panichayupakaranant P. Synergistic effect of artocarpin on antibacterial activity of some antibiotics against methicillin-resistant Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, and Escherichia coli. Pharmaceutical Biology 2016;54(4):686-91.

Khatoon A, Mohapatra A, Satapathy KB. Studies on in vitro evaluation of antibacterial and antioxidant activities of Sterculia foetida L. bark. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research 2016;7(7):2990-5.

El-Sherei MM, Ragheb AY, Kassem MES, Marzouk MM, Mosharrafa SA, Saleh NAM. Phytochemistry, biological activities and economical uses of the genus Sterculia and the related genera: a review. Asian Pacific Journal of Tropical Disease 2016;6:492-501.

Shamsundar SG, Paramjyothi S. Preliminary pharmacognostical and phytochemical investigation on Sterculia foetida Linn. Seeds. African Journal of Biotechnology 2010;9(13):1987-9.

Jafri A, Bano S, Rais J, Khan F, Shivnath N, Sharma AK. Phytochemical screening of Sterculia foetida seed extract for anti-oxidant, anti-microbial activity, and detection of apoptosis through reactive oxygen species (ROS) generation, mitochondrial membrane potential (MMP) decrease, and nuclear fragmentation in human osteosarcoma cells. Journal of Histotechnology 2019;42(2):68-79.

Rabin N, Zheng Y, Opoku-Temeng C, Du Y, Bonsu E, Sintim H. Biofilm formation mechanisms and targets for developing antibiofilm agents. Future Medicinal Chemistry 2015;7(4):493-512.

Clinical & Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 27th ed. Wayne, PA: CLSI; 2017.

Awolola GV, Koorbanally NA, Chenia H, Shode FO, Baijnath H. Antibacterial and antibioflim activity of flavonoids and triterpenes isolated from the extracts of Ficus Sansibarica WARB. SUBSP. Sansibarica (Moraceae) extract. Material and Methods Collection of plant material 2014;11(3):124-31.

Sedlarik V, Galya T, Sedlarikova J, Valasek P, Saha P. The effect of preparationtemperature on the mechanical and antibacterial properties of poly (vinyl alcohol) silver nitrate films. Polymer Degradation and Stability 2010;95:399-404.

Shappell NW. Ergovaline toxicity on Caco-2 cells as assessed by MTT, alamar Blue, and DNA assays. In Vitro Cellular & Developmental Biology Animal 2003;39(7):329-35.

El-Sherei M, Ragheb AY, Kassem MES, Marzouk MM, Mosharrafa SA, Saleh NAM. Phytochemistry, biological activities and economical uses of the genus Sterculia and the related genera: a review. Asian Pacific Journal of Tropical Disease 2016; 6 : 492-501.

Vital PG, Velasco RN, Demigillo JM, Rivera WL. Antimicrobial activity, cytotoxicity, and phytochemical screening of Ficus septica Burm and Sterculia foetida L. leaf extracts. Journal of Medicinal Plants Research 2010;4:58-63.

Kim N, Pham T, Nguyen TD, Doan TDC, Ha TD, Tran NMA, et al. Stercufoetin A, new oleanane-type triterpenoid from the leaves of Sterculia foetida L. Natural product Research 2021;35(7):1226-31.

Gupta PD, Birdi TJ. Development of botanicals to combat antibiotic resistance. Journal of Ayurveda and Integrative Medicine 2017;8:266-75.

Rabin N, Zheng Y, Opoku-Temeng C, Du Y, Bonsu E, Sin TH. Biofilm formation mechanisms and targets for developing antibiofilm agents. Future Medicinal Chemistry 2015;7(4):493-512.

Frassinetti S, Gabriele M, Moccia E, Longo V, Gioia DD. Staphylococcus aureus and growth effects on probiotic Lactobacillus spp. Lebensmittel-Wissenschaft & Technologie 2020;124:109149.

Gandhi AD, Vizhi DK, Lavanya K, Kalpana VN, Rajeswari VD, Babujanarthanam R. In vitro anti-biofilm and anti-bacterial activity of Sesbania grandiflora extract against Staphylococus aureus. Biochemistry and Biophysics Report 2017;12:193-7.

Lee JH, Kim JG, Raorane CJ, Ryu SY, Shim JJ, Lee J. The anti-biofilm and anti-virulence activities of trans-resveratrol and oxyresveratrol against uropathogenic Escherichia coli. The Journal of Bioadhesion and Biofilm Research 2019;35(7):758-67.

Boonyanugomol W, Kraisriwattana K, Rukseree K, Boonsam K, Narachai P. In vitro synergistic antibacterial activity of the essential oil from Zingiber cassumunar Roxb against extensively drug-resistant Acinetobacter baumannii strains. Journal of Infection and Public Health 2017;10(5):586-92.

Ruangnoo S , Jaiaree N, Makchuchit S, Panthong S, Thongdeeying P, Itharat A. An in vitro inhibitory effect on RAW 264.7 cells by anti-inflammatory compounds from Smilax corbularia Kunth. Asian Pacific Journal of Allergy and Immunology 2012;30(4):268-74.

Rollando R, Warsito W, Masruri M, Widodo W. Sterculia foetida Leaf fraction against matrix metalloproteinase-9 Protein and 4T1 breast cancer cells: In-vitro and In-Silico Studies. Tropical Journal of Natural Product Research 2021;5(1):113-21.

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

2022-05-01 — อัปเดตเมื่อ 2026-02-06

เวอร์ชัน